“1971 年，Judah Folkman 教授提出 “肿瘤生长和转移依赖于血管新生” 理论，认为新血管的形成关于肿瘤生长和转移至关重要。”
肿瘤细胞需要新生血管来提供营养和氧气，以维持其连续生长和扩散。研究肿瘤细胞的血管生成能力和血管侵袭能力关于了解肿瘤生物学机制，以及生长抗肿瘤治疗战略具有重要意义。成血管实验可以模拟肿瘤微情况，评估肿瘤细胞及其周围细胞对血管生成的影响。
成血管实验怎样设计？
跪求具体实验 Protocol？
一文走进热门实验技术，为宣布高分文献提供新思路，“胶”你做实验！
TIPS：
l 在成血管前需要饥饿培养细胞，以增加细胞对生长因子和刺激因子的敏感性，增进血管生成。常用于成血管研究的细胞类型有 HUVEC、HMVEC、HMEC-1 等
l 在成血管实验中通常有比照组与添加增进或抑制血管生成的药物进行比照，以研究该药物对肿瘤细胞成血管的影响。
l 一般成血管实验使用的基质胶浓度建议至少 10mg/mL，更高浓度的基质胶效果会缩短血管开始形成的时间，并且血管形成时间更长，易于确定视察时间窗口。
前排插播
前排插播
NEST 的 GelNestTM基质胶取自小鼠肿瘤组织，可增强细胞粘附、剖析和增殖。它模拟生理情况，是组织工程和细胞培养研究的理想选择，尤其适用于类器官和干细胞培养。它另有助于癌症研究，如侵袭、血管生成和体内肿瘤形成实验。
成血管专用款基质胶浓度在 12-14mg/mL，相比标准款与低因子款更适适用于体外成血管实验。
质料与要领
质料与要领
Part.01 GelNestTM成血管专用基质胶包被
1. 在 96 孔板的底部均匀铺上 50?L GelNest?基质胶原液（推荐 211492，浓度>12mg/mL），添加时制止气泡爆发。24 孔每孔约加 280μL，其他孔板按培养面积巨细增减。（为避免基质胶粘附在枪头内壁， 在吸取基质胶前可用枪头吹吸一次 FBS，对枪头内壁进行 FBS 润洗。）
2. 将培养板置于 37℃培养箱 30 至 60 分钟。若有液体剩余，可用移液枪轻轻吸出。
3. 包被好的培养板请尽快使用。
Part.02 HUVEC细胞培养与成血管
1. 将 HUVEC 细胞培养至 70-80%的汇合度，原代细胞代数应该在 5 代以内。
2. 将完全培养基替换成饥饿细胞用培养基：含 0.2% FBS（减血清）、2mM L-谷氨酰胺、1mM 丙酮酸钠、100U/mL 青霉素和 100?g/mL 链霉素的 DMEM 培养基，饥饿培养 24 小时。
3. 胰酶消化 HUVEC 细胞并进行细胞计数。
4. 将 5x104个 HUVEC 细胞加入含基质胶的 96 孔板的单孔中，每孔体积控制在 200?L。将 96 孔板放入培养箱中进行培养。
5. 血管样网络结构预计将在 3 至 12 小时内形成。首次实验请每隔一小时视察一次，以防血管结构继续剖析，错过视察窗口。
Part.03 染色与视察
1. 血管样网络结构可以直接用相差显微镜视察，也可以用以下办法进行荧光染色。
2. 小心去除培养基，制止破坏血管结构。加入200μL HBSS缓冲液润洗两次，并除去。
3. 加入1/1000浓度的Calcein AM（绿色）培养基进行染色。
4. 使用荧光显微镜对细胞进行成像，并纪录剖析血管网络的形态和特征。
实验结果剖析
实验结果剖析
图 1.HUVEC 细胞划分在竞品和本公司（GelNest Matrix）基质胶上培养 9 个小时后形成血管网络的结果。标尺为 300?m。
可视察到在 GelNestTM 基质胶中血管样网络结构形成良好。
常见问题与解答
常见问题与解答
1. 应该接纳何种培养基稀释基质胶？
建议使用不加双抗、不加胎牛血清的高糖DMEM培养基稀释基质胶。
2. 如何使铺胶更均匀？
枪头要笔直于内孔的正上方，避免有基质胶流经孔壁残留。
若是孔的底部没有铺满基质胶，可以晃动一下96孔板，使底部铺胶均匀。
若照旧没有均匀铺满底部，可用枪头稍微搅动一下。
3. HUVEC必须用专用培养基吗？能不可用普通培养基？
(1) 若使用普通培养基需要添加生长因子，常见的有ECGF/ECGF，ECGF。
(2) 普通培养基+生长因子的方法价格较贵，建议使用专用ECM内皮专用培养基。
4. HUVEC细胞系换液第二天为何泛起空泡化？如何解决空泡化问题？
可能原因：
(1) 培养液的pH值与细胞正常所需pH值差别太大，细胞代谢异常导致空泡化；
(2) 在细胞培养历程中由于血清浓度不敷、药物作用、外界刺激等情况，导致细胞代谢泛起问题，内质网应激导致泛起细胞空泡化的情况。
解决要领：
(1)测定完全培养基的pH，看其酸碱性是否适宜。大都细胞适宜的pH规模为7.2-7.4。
(2)若培养基或血清是已开封且存放了很久，建议使用新鲜的完全培养基给细胞换液；若都是新开封的，建议使用新批次的基础培养基或血清来配制培养液，给细胞换液并进行视察。
5. HUVEC培养历程中泛起聚团如那边置？
聚团可能是因为培养板亲水性差或者血清中的促贴壁因子缺乏。
解决要领：
(1) 培养瓶使用前一天使用明胶包被。
包被要领：以T25瓶为例，取用5mL明胶放入T25瓶中，37℃安排30分钟以上，将多余的明胶吸出。
(2) 提高培养液中基质胶浓度。
(3) 使用ECM内皮专用培养基进行配置。
6. 如何判断加入的基质胶体积是否合适？
在孔板下方安排一张格子纸(如图)，笔直透过每个孔视察：
(1) 如果视察到的格子比实际尺寸小，基质胶加入的体积过少；
(2) 如果视察到的格子比实际尺寸大，基质胶加入的体积过多；
(3) 如果视察到的格子与实际尺寸一致，基质胶加入的体积适合。
7. 如何解决成管实验中细胞不可形成连续的网格的问题？
建议使用3-5代状态较好且融合度70%-80%的HUVEC细胞进行成管试验，此时的细胞成管能力较强。
在显微镜下边视察边使用胰酶消化细胞，当细胞变圆时实时终止消化历程。消化太过会影响成管效果。
尽可能包管细胞数量约为3万个/孔，细胞数量过少会使细胞无法形成连续的网络。
选择低生长因子基质胶进行成管实验时，可考虑在培养基中添加生长因子，刺激细胞形成网络状。
8. 细胞铺板数量如何确定？
由于计数方法的差别可能导致细胞数量的差别，可进行预实验测试合适的细胞数铺板，适宜的细胞数量如下图：
9. 成管实验需要几个小时？小管形成后为何会塌缩？
成管时间与细胞状态密切相关。细胞状态好时，2-3小时开始成管，细胞状态较差时，可能18-24h成管。建议第一次实验时，每隔一个小时视察一次。
成管时间取决于培养基中血管生成因子的浓度。肿瘤条件培养基中血管生成因子较富厚，容易成管，而基础培养基所需要的成管时间较久。
如果使用原代内皮细胞而非永生化细胞，开始成管的时间会延迟数个小时。
小管形成后有塌缩可能是培养时间过久，内皮细胞爆发凋亡。
10. 血管形成实验中使用的凝胶是否需要含酚红？
关于使用相差显微镜，酚红不会滋扰图片，并且由于其颜色，处理更容易。
然而，当使用荧光显微镜时，酚红可能会滋扰探头的波长。在这种情况下，最好使用无酚红凝胶。
